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实验材料大鼠小鼠仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤将动物固定或麻醉后,露出鼠尾,将尾巴置于45℃~50℃热水中浸泡数分钟,使血管扩张。擦干鼠尾后,将尾尖剪去1~2mm(小鼠)或5mm(大鼠)。从尾根部向尾尖部按摩,血即从断端流出。......
实验材料 狗 猫仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 此方法可取较多的血。先将狗麻醉固定,固定时将颈部尽量后仰,助手用手压住颈静脉入胸部的皮肤,使静脉怒张。操作者用左手绷紧进针部位的皮肤,右手拿注射器沿血管向心端刺入。采血后应注意止血。
实验材料 豚鼠仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 固定动物,将其右或左后关节伸直,将动物脚背面用酒精消毒,找出背中足静脉后,一手拉住豚鼠的趾端,一手用注射器刺入静脉。拔针后立即出血,呈半球状隆起。采取后应压迫止血
实验材料狗猫仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤此方法可取较多的血。先将狗麻醉固定,固定时将颈部尽量后仰,助手用手压住颈静脉入胸部的皮肤,使静脉怒张。操作者用左手绷紧进针部位的皮肤,右手拿注射器沿血管向心端刺入。采血后应注意止血。经验交流
其实大鼠尾静脉注射步骤和小鼠基本类似,只是...... 因为大鼠,个体更大,难固定、易挣扎;尾巴颜色深,不易辨别血管;尾巴质地更粗糙,扎针力度要更大; 因此大鼠尾静脉注射操作难度更大。如下图分别为小鼠和大鼠的尾巴,可见大鼠尾巴的质地粗糙,难辨别血管的特点: 小鼠尾巴(左)和大鼠尾巴(右) 大鼠尾静
实验材料狗猫仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤采血量较少时可用此法。用针头刺破静脉采血或直接用空针抽取
实验材料狗猫仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤前肢选用内侧皮下头静脉,位于前肢前部,在下1/3处向内侧走行;后肢选用外侧的隐静脉,位于跗关节外侧,距跗关节上方5~10cm处的皮下,由前斜向后上方走行。采血时,先将狗固定,用止血带扎住穿刺部位的上方,使静脉充盈。操作者手持注射器采血。
实验材料 狗 猫仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 采血量较少时可用此法。用针头刺破静脉采血或直接用空针抽取。
实验材料 狗 猫仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 前肢选用内侧皮下头静脉,位于前肢前部,在下1/3处向内侧走行;后肢选用外侧的隐静脉,位于跗关节外侧,距跗关节上方5~10cm处的皮下,由前斜向后上方走行。采血时,先将狗固定,用止血带扎住穿刺部位的上方,使静脉充盈。操作者手持注射器采血。
名称:实验动物的取血关键词:动物,取血,方法目的:规范实验动物(家兔、狗,豚鼠)取血的方法和途径,主体内容:(一)家兔1.耳缘静脉取血法选好耳缘静脉,拔去被毛,用二甲苯或酒精涂擦局部,小血管夹夹紧耳根部,使血管充血扩张。术者持粗针头从耳尖部血管,逆回流方向刺入静脉内取血,或用刀片切开静脉,血液自动流
所需仪器:XL03RH型控温离心机(低速冷冻离心机,可使用24*15ml离心管,水平转子);抽血注射器(大小与抽血体积相一致)试剂:Optiprep;Tricine-缓冲盐溶液(TBS,仅小鼠血)0.85%(质量浓度)NaCl,10mmol/L Tricine-NaOH(ph = 7.4)。 方法:
经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验,如经皮Lao测定常用大鼠,皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验,皮肤刺激试验常用兔和豚鼠,皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除:试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为:①硫
(三)经皮肤染毒>
经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验,如经皮Lao测定常用大鼠,皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验,皮肤刺激试验常用兔和豚鼠,皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除:试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为:
第五节 实验动物的采血法实验研究中,经常要采集实验动物的血液进行常规质量检验、细胞学实验或进行生物化学分析,故必须掌握正确的采集血液的技术。采血方法的选择,主要决定于实验的目的和所需血量以及动物种类。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血:需血量很少时常用本法,如作红、白细胞计数、血红蛋白测定、制作
第五节 实验动物的采血法实验研究中,经常要采集实验动物的血液进行常规质量检验、细胞学实验或进行生物化学分析,故必须掌握正确的采集血液的技术。采血方法的选择,主要决定于实验的目的和所需血量以及动物种类。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血:需血量很少时常用本法,如作红、白细胞计数、血红蛋白测定、制作
英国《自然》杂志12月20日发表了一项基因治疗领域成果:因高水平基因组编辑技术而闻名世界的博德研究所表示,基因编辑技术(CRISPR-Cas9,也称“基因魔剪”)现已被用于恢复人类遗传性耳聋小鼠模型的听力。最新研究凸显了CRISPR-Cas9技术用来医治显性遗传性听觉损失疾病的潜力。有将近一
实验材料小鼠仪器、耗材大培养皿注射器酒精棉实验步骤在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.5ml
实验材料 小鼠仪器、耗材 大培养皿注射器酒精棉实验步骤 在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.
(一)给药方法1.灌胃给药小鼠专用灌胃针由注射器和喂管组成,喂管长约1nm,喂管尖端焊有一金属小圆球,金属球中空,用途是防止喂管插入时造成损伤。金属球弯成20度角,以适应口腔与食道之间弯曲。将喂管插头紧紧连接在注射器的接口上,吸入定量的药液;左手捉住小鼠,右手拿起准备好的注射器。将喂管针头尖端防放
第一节 实验动物的抓取和固定在进行实验时,为了不损伤动物的健康,不影响观察指标,并防止被动物咬伤,首先要限制动物的活动,使动物处于安静状态,工作人员一定掌握合理的抓取固定方法。抓取动物前,必须对各种动物的一般习性知道。操作时要小心仔细、大胆敏捷、熟练准确、不能粗暴,不能恐吓动物,同时,要爱惜动物
实验材料大白鼠实验步骤大白鼠牙齿锋利,捕捉时要提防被咬伤。从笼内抓取周龄较小的大白鼠时,需抓住大白鼠尾巴的根部,不要让大白鼠悬在空中的时间过长,否则易激怒大白鼠并易致尾部皮肤脱落,抓取大的时,用左手从背部中央到胸部捏住,但用力不宜过大,最好戴防护手套,但手套不宜过厚(如图1)图1如若是灌胃、腹腔注射
写在前面发现动物行为或身体的异常变化是实验动物使用者日常工作的重要部分。在日常工作中,您有许多机会能观察动物的正常表现和行为。观察时,头脑中要了解某只、某特殊群体或特定类型动物的正常表现是什么。当我们得知某动物表现与正常不同时,那么该变化就可以称为临床症状,因为它可能是某种临床(或可见)疾病的征兆
实验概要虽然体细胞克隆技术已在不一样的物种的基因重编程基础研究中大范围的应用,但是近十年来利用该技术成功制备胚胎的效率特别低。尤其是在小鼠上,可克隆的小鼠系主要限于仔一代,如B6D2F1。最近,我们将TSA引进克隆技术中,使B6D2F1 小鼠卵丘细胞为供体细胞的核移植胚胎成功制备率提高了2-5倍。
实验动物中采用的给药方法众多,根据药物性质和实验目的不同,需要采用不一样的给药方式,如上一期介绍的灌胃、腹腔、皮下注射及静脉注射给药,在这几种给药方式中尾静脉给药难度最大,却也是我们不可或缺的实验技能。今天,就和大家伙儿一起来分享下尾静脉注射的技巧。本次文章的主要内容丰富全面,大致上可以分为2部分,尾静脉注射基本步骤和技术
名称:大鼠灌注取脑 标准操作规程(SOP)关键词:大鼠 灌注取脑目的: 完整取出大鼠脑部(取材)操作步骤流程:1)麻醉 2)开胸 3)心脏左心室穿针,剪开右心耳 4)生理盐水冲水 5)4%多基甲醛固定 6)取脑 7)保存或切片.1 多聚甲醛的配置:一般方法为:4%多聚甲醛PBS缓冲液配法:称取40g
【摘 要】 目的: 探讨电针抗抑郁研究适宜模型的选择。方法:选用药物实验方法,观察去甲肾上腺素毒性实验小鼠的死亡率、5-羟色胺酸甩头实验小鼠甩头次数。用改变环境条件的方法,观察悬尾实验小鼠悬尾的不动时间和通过慢性应激模型观察开野实验大鼠的活动性及检测糖水实验糖水的摄入量。结果:与空白对照组相比,电针
投稿人:郭晓冲 中国医科大学动物部写给看文献的你们 系列四:小鼠、大鼠安乐死方法!!!当实验动物完成了它的使命后,它应该有权利没有痛苦的死去。安乐死是人类文明的产物,对实验动物进行安乐死也是文明的体现。美国兽医协会推出的动物安乐死指南(AVMAGuidelines for the Euthanasi
实验性自身免疫性神经炎(EAN)模型实验方法原理实验性自身免疫性神经炎(experimental all ergicalneuntis,EAN)于1955年由Waksman和Adams首次描述,其临床经过、神经电生理检查及病理学改变与吉兰-巴雷综合征最常见的临床亚型-急性炎症性脱髓鞘性多发神经炎(a
原理>
小鼠畸形受基因控制,具有高度遗传性,许多常染色体及X、Y性染色体基因直接或间接地决定形态。的畸形主要是指形态的异常,已知的畸形是决定形成的基因发生突变的结果。因此形态的改变提示有关基因及其蛋白质产物的改变。小鼠畸形试验可检测环境因子对生成、发育的影响,而且对已知的生